
2000년대에 들어와 비만과 골관절염(osteoarthritis, OA)의 관계에 대한 연구들이 활발히 진행되고 있다1,2). 이러한 연구들을 통해 비만은 OA와 대사증후군(metabolic syndrome, MetS)의 연관성에 있어서 주요한 기여요소로 주목되고 있으며, 연구결과 체중감소에 따른 OA 증상의 경감이 확인되었다3). 그러나 OA는 비만환자의 체중부하가 없는 관절에서도 흔하게 발생하여 체중부하에 따른 기계적인 현상이라기보다 인체대사체계에 따른 현상임을 암시하고 있다1).
이러한 추세에 따라 최근에는 OA를 단순한 생물 기계학적인 관절부하에 의한 질환으로서의 인식에서 벗어나 새로운 아형 OA로서의 대사성 골관절염(metabolic OA, MOA)의 개념이 대두되고 있다4).
또한 Kim 등8)의 선행연구에서 높은 항응집 효과를 나타내는 등 기존의 전통적인 OA의 염증개선 및 진통효과 이외의 효과에 대한 가능성을 확인하였다.
최근의 메타분석에서는 식물성 sterols와 stanols (2 g/day)의 섭취가 low density lipoprotein-cholesterol (LDL-C)을 각각 8.2% 및 9.3% 낮춘다는 연구결과가 도출되는 등 식물성 원료의 효능이 주목받고 있어9), 식물성 한약재로 구성된
본 연구를 통해 고지방 식이(high-fat diet, HFD)로 유도된 hyperlipidemia 동물 모델에서
1) 동물
체중 약 160~180 g인 Sprague Dawley계의 수컷 6주령 흰쥐 36마리를 ㈜샘타코(오산, 한국)에서 공급받아 모든 개체의 건강상태에 대한 외관검사를 실시한 뒤 고형사료와 물을 충분히 공급하면서 1주일 동안 사육실 환경(실내온도 24±2℃, 습도 50±5%, 12시간 dark/light)에 적응시킨 후 체중변화 및 일반적인 건강상태를 관찰한 후 건강한 개체를 선별하여 30마리를 시험에 투여하였다(동물실험계획 승인번호: 2018-01-01).
2) 고지방 사료
고지방 식이 사료(Research Diets, Inc., New Brunswick, NJ, USA)의 구성은 protein (20%), fat (60%), carbohydrate (20%)로 칼로리 구성은 casein 800 kcal/g, L-cystine 12 kcal/g, maltodextrin 500 kcal/g, sucrose 275.2 kcal/g, soybean oil 225 kcal/g, lard 2205 kcal/g, vitamin mix 40 kcal/g로 총 4.057 kcal/g이었다. 고지방 식이 사료를 5주간 공급한 후 3주간 고지방 식이 사료와 약물을 동시에 공급하였으며 실험은 총 8주동안 시행하였다.
3) 약재
사용한 약재는 강활(
Table I. Composition of
Latin name | Scientific name | Family | Used part | Rate | Source |
---|---|---|---|---|---|
Root | 6 | Korea | |||
Root | 4 | China | |||
Root | 4 | Korea | |||
Leaf | 4 | China | |||
Tree bark | 3 | China |
지표 성분을 확인하기 위하여 high-performance liquid chromatography를 통해 금은화 중 chlorogenic acid, 당귀 중 총 decursin, decursinol angelate, 황백 중 berberine chloride의 3종 성분을 확인하였다7,10).
4) 양성 대조 약물
양성 대조군으로는 simvastatin (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA)을 구입하여 100 mg/kg 농도로 음용 투여하였다.
1) 군 분리
실험군은 일반 사료를 공급한 정상군(Intact, n=6), 고지방 식이 사료를 공급하고 무처치한 대조군(Control, n=6), 고지방 식이 사료를 공급하며
Table II. The Experimental Design and Assignment of the Study.
Group | HFD feeding | Simvastatin | n | Remark | |
---|---|---|---|---|---|
Intact | X | X | X | 6 | |
Control | O | X | X | 6 | |
SV100 | O | X | O | 6 | 100 mg/kg |
CT100 | O | O | X | 6 | 100 mg/kg |
CT200 | O | O | X | 6 | 200 mg/kg |
CT400 | O | O | X | 6 | 400 mg/kg |
HFD: high-fat diet..
2) 시료 추출
강활, 금은화, 당귀, 위령선, 황백을 배합한 복합 시료
3) 체중 측정
체중은 전자 저울(㈜카스, 양주, 한국)로 측정하였으며, 실험기간인 8주 동안 매 7일에 1회씩 측정하여 주(week)간 체중 변화를 관찰하였다.
4) 혈청 분리
채혈에 의하여 얻어진 혈액은 VS 6000CFI (Vision Scientific Co., Ltd., Daejeon, Korea)를 사용하여 3,000 rpm으로 20분간 시행하여 혈청을 분리하였다.
5) 지질대사 측정
분리된 혈청으로 지질대사 측정 항목인 TCHO은 TCHO-PIII Slide (Fujifilm Corporation, Tokyo, Japan)를, HDLC은 HDL-C-PIII Slide (Fujifilm Corporation)를, TG는 TG-PIII Slide (Fujifilm Corporation)를 사용하여 Fuji Dri-Chem Clinical Chemistry Analyzer (DRI-Chem 4000ie; Fujifilm Corporation)로 측정하였으며, LDL-C은 TCHO 수치에서 TG/5 수치를 빼고 HDLC 수치를 뺀 값으로 계산하였다.
6) Total RNA 분리 및 reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR)
(1) Total RNA 분리
Total RNA의 분리는 liver 부위의 조직(50 mg)을 800 uL Trizol Reagent (Life Technologies, Carlsbad, CA, USA)를 넣고 precellys 24 (Bertin Technologies, Montigny-le- Bretonneux, France)에서 균질화하고, 균질액에 200 μL의 chloroform (Sigma-Aldrich)을 가하여 15초 동안 잘 흔들어 혼합한 후 실온상태에서 5분 방치하고 난 다음 세포 유잔물을 제거하기 위하여 4℃, 14,000 rpm에서 5분 동안 원심분리(Centrifuge 5415 R; Eppendorf, Hamburg, Germany)하였다. 원심분리로 얻어진 상층액에 500 μL의 isopropanol Sigma-Aldrich)을 첨가하여 실온상태에서 5분동안 방치한 후 RNA pellet을 얻기 위하여 4℃, 14,000 rpm에서 8분간 원심분리하고, 원심분리로 생긴 pellet에 냉장 보관된 70% ethanol과 함께 diethyl pyrocarbonate (DEPC)를 넣고 4℃, 7,500 rpm에서 5분간 원심분리 후 pellet만 남기고 모두 제거하고, 남은 ethanol은 실온에서 5분간 방치시켜 건조시킨 다음 DEPC-treated water에 녹여 spectrophotometer (Biophotometer; Eppendorf)에서 OD260 값을 읽어 RNA의 순도 및 농도를 정량하였다.
(2) RT-PCR
분리된 total RNA 5 μg과 2.5 μL Oligo (dT), DEPC- treated water를 RT premix (Bioneer, Daejeon, Korea)에 넣고 Mastercycler gradient (Eppendorf)를 이용, 50 μL cDNA를 합성하여 PCR 증폭을 위한 template으로 사용하였다. 또한 해당 실험에 housekeeping 유전자인 glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (sense primer: 5'-ATCCCATCACCATCTTCCAG-3', antisense primer: 5'-CCTGCTTTCACCACCTCCTT-3')를 internal control로서 사용하였다. Reverse transcription temperature cycle은 42℃에서 1시간 동안 cDNA synthesis, 94℃에서 5분동안 denature 그리고 4℃에서 5분동안 cooling시키는 단계를 거쳤다. Leptin, PPAR, adiponectin 유전자에 대한 백서의 특이 primer는 PCR-premix kit (Bioneer)를 사용하였다. PCR은 cDNA, sense primer, antisense primer, DEPC-treated water를 PCR premix (Bioneer)에 넣었다. PCR temperature cycle은 cDNA의 증폭을 위하여 95℃에서 300초동안 pre-denaturation, 94℃에서 40초동안 melting, leptin은 59℃, PPAR과 adiponectin은 58℃에서 40초동안 annealing, 72℃에서 90초동안 extension하는 과정을 40회 반복 수행하고 마지막 cycle에서 72℃에서 600초동안 extension 단계를 거쳐 leptin primer (sense primer: 5'-CCTGTGGCTTTGGTCCTATCTG-3', antisense primer: 5'-AGGCAAGCTGGTGAGGATCTG-3), PPAR primer (sense primer: 5'-CTCCTGTTGACCCAGAGCAT-3", antisense primer: 5'-CAACCATTGGGTCAGCTCTT-3), adiponectin primer (sense primer: 5'-GGAACTTGTGCA GGTTGGAT-3', antisense primer: 5'-GCTTCTCCAGGC TCTCCTTT-3')을 이용하여 유전자증폭을 Mastercycler gradient에서 시행하였다.
이렇게 증폭된 leptin, PPAR, adiponectin의 DNA를 Greenview nucleic acid gel stain (1:10,000; IO Rodeo Inc., Pasadena, CA, USA)를 포함한 1.5% agarose gel상에서 0.5×TBE buffer (80 mM Tris-HCL, 80 mM boric acid, 2 mM EDTA, pH 8.3)로 100 V에서 전기 영동하여 관찰한 후 Image Station (Samsung, 서울, Korea)을 이용하여 촬영하였으며, Alphaease FC StandAlone Software (Alpha Innotech, San Leandro, CA, USA)를 이용하여 측정하였다.
실험 성적은 평균값과 표준오차(mean±standard error)를 통해 표시하였다. 각 실험군 간의 통계학적 분석은 Window용 SPSS (Version 10.05; IBM Co., Armonk, NY, USA)를 이용하였으며, 비모수적 방법 중 n<30의 경우에 사용하는 Mann-Whitney U test를 시행하였다. 전체 실험결과 중 신뢰구간 p<0.05와 p<0.01에서 통계적 유의성을 부여하였다.
Table III. Changes on the Serum TCHO, TG, HDL-C and LDL-C Contents after
Group | TG (dL/L) | TCHO (dL/L) | HDL-C (dL/L) | LDL-C (dL/L) | ||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Intact | 54.0±2.3 | 61.0±1.5 | 46.0±2.8 | 4.2±1.7 | ||||
Control | 59.5±5.2 | 77.3±2.1 |
32.5±0.6 |
32.9±1.9 |
||||
SV100 | 38.6±3.9+ | 66.0±2.4+ | 38.4±1.8+ | 16.6±3.3++ | ||||
CT100 | 44.5±4.9 | 77.2±5.4 | 45.3±3.8+ | 22.9±1.3++ | ||||
CT200 | 50.2±5.2 | 74.3±4.3 | 44.2±2.9++ | 20.1±1.7++ | ||||
CT400 | 39.8±5.7 | 68.8±4.4 | 38.3±2.3 | 22.5±1.9++ |
Values are expressed mean±standard error..
Intact: no HFD and no treatment, Control: HFD, no treatment, SV100: HFD, simvastatin 100 mg/kg treatment, CT100, CT200, CT400: HFD,
**p<0.01 compared with intact, +p<0.05, ++p<0.01 compared with control..
1) Leptin
Table Ⅳ. Changes on the Serum Leptin, Adiponectin and PPAR Contents after
Group | Leptin (*103 OD) | Adiponectin (*103 OD) | PPAR (*103 OD) | |||
---|---|---|---|---|---|---|
Intact | 125.9±1.8 | 127.3±3.0 | 110.4±2.0 | |||
Control | 145.2±2.1 |
119.1±1.7 |
145.0±4.2 |
|||
SV100 | 155.3±2.0 | 125.4±1.4+ | 128.3±3.1++ | |||
CT100 | 138.6±2.0+ | 128.4±1.4++ | 141.6±4.0 | |||
CT200 | 135.2±1.9++ | 137.3±1.7++ | 117.4±2.5++ | |||
CT400 | 143.6±1.7 | 124.5±1.9 | 125.9±2.9++ |
Values are expressed mean±standard error..
Intact: no HFD and no treatment, Control: HFD, no treatment, SV100: HFD, simvastatin 100 mg/kg treatment, CT100, CT200, CT400: HFD,
*p<0.05, **p<0.01 compared with intact, +p<0.05, ++p<0.01 compared with control..
2) Adiponectin
3) PPAR
Table Ⅴ. Changes on the PAF and TXB2 Contents after
Group | PAF (pg/mL) | TXB2 (pg/mL) |
---|---|---|
Intact | 10.9±1.1 | 64.6±5.5 |
Control | 18.9±2.3 |
68.5±3.5 |
SV100 | 12.7±2.7 | 71.2±4.6 |
CT100 | 11.9±0.9+ | 74.3±7.5 |
CT200 | 13.1±1.1+ | 61.7±2.2 |
CT400 | 13.1±1.4 | 62.0±8.6 |
Values are expressed Mean±standard error..
Intact: no HFD and no treatment, Control: HFD, no treatment, SV100: HFD, simvastatin 100 mg/kg treatment, CT100, CT200, CT400: HFD,
*p<0.05 compared with intact, +p<0.05 compared with control..
Table Ⅵ. Changes of Body Weight after
Group | 0 week | 1 week | 2 week | 3 week | 4 week | 5 week | 6 week | 7 week | 8 week |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Intact | 0.00±0.00 | 70.50±2.48 | 110.83±4.83 | 129.83±8.52 | 158.50±8.90 | 175.00±10.16 | 194.00±11.82 | 213.50±13.21 | 225.50±15.09 |
Control | 0.00±0.00 | 64.88±3.08 | 119.88±6.69 | 159.75±9.90 |
199.63±13.23 |
230.75±15.97 |
256.75±18.06 |
281.63±20.00 |
300.63±20.55 |
SV100 | 0.00±0.00 | 66.17±2.70 | 118.83±5.26 | 161.17±6.37 | 194.67±8.50 | 225.67±10.06 | 249.67±11.8 | 274.00±13.01 | 291.50±14.02 |
CT100 | 0.00±0.00 | 67.00±2.14 | 121.33±2.72 | 161.50±5.29 | 195.50±7.68 | 231.83±7.57 | 2257.17±8.72 | 281.33±10.32 | 298.17±11.35 |
CT200 | 0.00±0.00 | 65.50±2.20 | 117.00±6.02 | 158.17±9.87 | 192.83±12.20 | 225.00±13.99 | 252.50±14.38 | 271.17±17.10 | 289.00±15.72 |
CT400 | 0.00±0.00 | 68.50±3.62 | 120.17±5.02 | 158.00±5.23 | 191.50±7.14 | 224.50±8.77 | 250.17±9.10 | 276.50±10.43 | 294.83±11.06 |
Values are expressed mean±standard error..
Intact: no HFD and no treatment, Control: HFD, no treatment, SV100: HFD, simvastatin 100 mg/kg treatment, CT100, CT200, CT400: HFD,
*p<0.05 compared with Intact..
현대의 풍부한 에너지, 지방 및 당이 많이 함유된 음식과 음료의 소비, 서구화된 식이는 HFD 섭취의 증가로 이어진다11). HFD는 체중 증가, 공복혈당 및 인슐린 수준의 변화를 초래하고, metabolite profile에 뚜렷하고 장기적인 변화를 나타낸다12).
대사증후군(MetS)은 내당능 장애, 고혈압, 고콜레스테롤혈증, 고중성지방혈증 및 비만을 포함한 신체증후군을 지칭하는 말로서13), 과도한 당과 포화지방의 만성적 섭취는 MetS 뿐만 아니라 2형 당뇨(type 2 diabetes mellitus, T2DM)로의 이환에도 영향을 준다는 연구결과와 이러한 식이섭취로 인한 혈액의 대사산물의 수준에 따라 발생한 세포 및 인체 구성의 변화가 OA의 병원임을 암시하는 연구도 진행되었다11,14).
TG는 공복상태에서 LDL-C, 식후엔 chylomicron에 의해 운반된다15). 식후 증가된 TG 및 TG 함유 지단백은 동맥경화 관련 질환, 인슐린 저항성 및 T2DM, 가족력에 의한 고콜레스테롤혈증 및 고지질혈증의 병리적 변화와 밀접한 관계가 있다16). TG, TG 함유 지단백, 유리 지방산 및 산화 콜레스테롤 등이 풍부한 HFD는 혈관내피세포의 기능이상과 동맥경화의 병리적 변화에 핵심적 역할을 한다17,18).
여러 다른 실험연구들에서 고콜레스테롤혈증은 연골악화 요인보다 골극 생성과의 연관성이 높은 것으로 보고되고 있으며19,20), 활액막(synovial membrane, SM)에서 대식세포, 내피세포 및 섬유모세포는 지방 조직과 함께 활액기질을 구성하는데, 이들은 체내 지질 수준에 따라 민감하게 변화한다19,21).
지방세포에서 분비하는 adipokines는 중추 및 말초 모두에서 혈압조절, 에너지 소비, 음식 섭취, 지혈, 세포 대사 및 염증 등과 관련된 다발적 기능을 나타낸다. Adipokines는 OA 이환 시 SM, 연골, 관절내 지방조직에서도 합성되는데 OA 병리과정 중 전염증(proinflammation), 동화 및 이화과정에 관여하는 것으로 밝혀졌다22-24).
대표적인 adipokines인 leptin은 OA 발병 기전에서 핵심적 역할을 한다. Dumond 등의 연구에서 OA 환자로부터 얻은 활액(synovial fluid) 내 leptin의 존재와 leptin 수준과 신체질량지수(body mass index) 사이의 유의한 상관관계를 확인하였으며, leptin의 관절 내 주사는 메신저 RNA (mRNA)와 단백 동화 작용을 발휘할 수 있는 단백질 수준과 관련하여 인슐린유사성장인자-1 (IGF-1)의 합성과 형질전환증식인자β(TGF-β)를 강력하게 자극하는 것으로 나타났다25).
또 하나의 대표적인 adipokines인 adiponectin은 비만과 T2DM에서 그 수준이 감소하며, 감소된 adiponectin은 심혈관질환, T2DM 및 MetS에 광범위한 영향을 미칠 수 있다는 증거가 속속 나타나고 있다26-28). 그러나 비만인 사람 중 정상군에 비해 류마티스 관절염(rheumatoid arthritis, RA) 환자군에서 혈장 내 수준이 높고 OA 환자군의 혈장 내 수준은 OA 관절의 활액 내 수준의 100배에 달하는 등 논쟁의 여지가 있다29,30). SM과 무릎 아래 지방체(infrapatellar fat pad)는 OA 관절에서 adiponectin의 주 공급원이며, 이곳에서의 adiponectin 조절장애가 관절염과의 연관성이 있음을 알 수 있다22,23). 그런데 Unger의 토끼 실험에서 SM에서의 leptin 및 adiponectin 유전자 발현은 대조군과 비교하여 OA 및 OA-HFD 그룹에서 감소하였으나, 혈장내 순환 leptin은 OA-HFD군에서 현저히 증가했다31). 이러한 연구들을 통해 지질대사이상에 의한 SM의 adipokines의 조절장애가 RA 및 OA의 위험요인이 될 수 있음을 추론할 수 있다.
HFD는 외과적 방법으로 무릎관절의 OA를 유도한 토끼 실험에서 SM의 염증을 악화시킨다. 토끼의 SM에는 대식세포의 침윤 증가와 더불어 지질대사로 remodeling된 지방조직과 염증전구물질(proinflammatory cytokines)의 증가가 나타났다. HFD는 지방세포의 이상지질혈증과 대식세포의 침윤증가에 의한 지질독성을 초래하고, 이는 OA와 MetS를 가진 환자의 관절기능 악화에 결정적인 역할을 하는 것으로 추정된다32).
또한 쥐의 전방십자인대(anterior cruciate ligament)에 대한 외과적 처치로 불안정성을 유도한 실험에서 자당(sucrose)과 HFD로 유발된 비만은 불안정성을 유도한 쥐의 무릎의 OA 발현에 독립적인 위험요인으로 나타났다. 체지방 비율은 식이유도비만(diet induced obesity)에 의한 염증성 변화를 촉진하여 MOA에 핵심적인 역할을 한다33).
PPAR은 핵 수용체 superfamily의 하나로 말초 인슐린 감수성, 지방 생성 및 포도당 항상성에 관여하는 유전자의 발현을 조절한다. PPAR의 강제 발현은 중성 지질의 축적 및 지방 세포-특이적 유전자 패턴의 발현에 의해 성숙한 백색 지방세포로의 분화를 촉진하여 지방축적을 초래한다34,35). 특히 PPARγ 활성화로 인한 지방세포 전구세포의 분화를 고려하면 PPARγ를 활성화시키는 화합물은 암세포의 분화를 유도할 수 있다. 강력한 PPARγ 작동제인 TZD 유도체 efatutazone은 역형성 갑상선 암종, 비소세포 폐암 및 췌장암 등 여러 종류의 암의 분화를 유도하는 것으로 보고되었다36-38). 따라서 PPAR 수의 증가 및 과도한 활성화는 지방축적 및 이상분화를 통한 신생물 분화의 위험요인이 될 수 있다.
또한 과도한 당과 포화지방의 만성적 섭취는 MetS뿐 아니라 T2DM으로의 이환에도 영향을 준다는 연구결과 뿐만 아니라 이러한 식이섭취로 인한 혈액의 대사산물의 수준에 따라 발생한 세포 및 인체 구성의 변화가 OA의 병원임을 암시하는 연구에서 T2DM 환자도 OA 위험인자에 노출되어 있음을 추론할 수 있다14).
T2DM 환자는 비정상적인 혈장지질 프로파일을 보인다. 당뇨병성 이상지질혈증은 고중성지방혈증, 저밀도의 HDL-C 및 고아포지단백B (hyperapolipoprotein B)의 정량적 변화와 더불어 역콜레스테롤 수송 및 항산화 특성 등 HDL-C 및 LDL-C의 질적 변화도 발생된다39,40).
이상에서 살펴본 바와 같이 HFD는 MetS뿐 아니라 OA에 대한 위험인자로 대두되고 있으며14), SM의 adipokines의 조절장애를 유발하며22,23,32), 지방세포 분화 등에 영향을 미쳐 PPAR 등의 변화로 OA 및 암 등의 위험인자로도 지목되고 있다34-38).
본 관찰실험에서도 HFD 투여로 대조군에서 체중 및 혈청 내 TG, TCHO, LDL-C, leptin, PPAR, PAF의 유의한 증가와 HDL-C 및 adiponectin의 유의한 감소가 나타났으나 TXB2는 유의한 변화가 없었다.
Adipokines에 미치는 영향을 관찰한 결과, leptin은 대조군에 비해 CT100/200군에서 통계적으로 유의하게 감소하였으며(Fig. 2, Table IV), adiponectin은 대조군에 비하여 CT100/200군에서 통계적으로 유의하게 증가하였다(Fig. 3, Table IV). PPAR은 대조군에 비해 CT200/400군에서 유의하게 감소하였다(Fig. 4, Table IV).
그런데 지질대사가 개선되어 수준이 증가하는 것이 좋은 HDL-C 및 adiponectin과 감소하는 것이 좋은 LDL-C, leptin 및 PPAR의 변화를 살펴보면
한편 simvastatin을 투여한 양성대조군 SV100군과의 비교결과, 통계적으로 유의한 수준의 변화를 보인 결과 중, HDL-C는 CT100군에서 SV100군보다 많은 증가를 보였고, LDL-C는 CT200 및 CT400에서 SV100군과 비슷한 수준의 감소를 보였다. Leptin과 PPAR은 CT200군에서, PAF는 CT100군에서 SV100군보다 많은 감소를 보였으며, adiponectin은 CT200군에서 SV100군보다 많은 증가를 보였다(Figs. 1~5, Tables III~V).
스타틴은 콜레스테롤의 생체합성 저해제로서 HMG-CoA 환원효소 억제제로도 알려져 있으며, 콜레스테롤 및 그 전구체의 세포 내 수준을 낮추고 간의 LDL-C 수용체의 상향조절을 통해 LDL-C의 이화작용을 강화하여 장 내 지단백의 생성을 감소시킨다41).
그러나 스타틴은 용량의존적으로 근육병을 유발할 수 있다. 스타틴의 용량 증가와 인체 대사 노출 증가는 크레아틴 분해효소(creatine kinase)의 증가와 근육독성을 증가시킨다. 또한 스타틴은 인슐린 분비장애 및 저하된 인슐린 감수성으로 인한 혈당 항상성 변화로 T2DM을 유발한다는 보고들이 잇따르고 있다42,43). 최신 연구에서는 용량의존적으로 골감소증(osteoporosis)의 유발 가능성에 대한 보고도 있다44).
PAF는 급성 염증 과정의 강력한 자극제인 알레르기 반응의 인지질 매개체로 면역 또는 비면역 자극에 의한 활성화 시 다양한 염증 세포에 의해 생성되어 혈관투과성 및 혈액응고에 관여한다45). 실험결과 CT100군 및 CT200군에서 대조군에 비해 유의한 감소를 나타냈다(Fig. 5, Table V).
TXB2는 최근 연구에서 노령 환자와 심방세동 등 심혈관질환 기왕력이 있는 사람에게서 높게 나타나 죽상경화증 등 혈관염증과의 상관관계가 있는 것으로 추정되고 있다46). TXA2는 혈소판 응집, 혈관 수축 및 증식을 촉진하는 급성 및 만성 효과로 많은 심혈관 질환에의 병인으로 지목되고 있다. 그러나 TXA2는 약 30초 정도의 매우 짧은 반감기를 가지며 TXB2로 추가로 대사되고 소변으로 배설되므로 TBX2로 혈관염증의 정도를 추정한다47,48). 실험결과 군간 통계적 유의성 있는 변화는 나타나지 않았으나 CT200/400군에서 낮아지는 경향을 보였다(Fig. 6, Table V). 따라서
체중변화는 HFD 투여 3주부터 정상군에 비해 대조군의 유의한 증가가 나타나기 시작했으나 약물의 종류 및 용량에 따른 유의한 변화는 관찰되지 않았다(Fig. 7, Table VI).
이상과 같이
따라서 기존에 확인된 OA 치료효과 뿐만 아니라 지질대사산물 개선에 따른 고지혈증 및 MetS 개선에도 효과가 있음을 추론할 수 있었다. 더불어 스타틴을 투여한 SV100군과 유사한 수준의 혈중지질 개선효과 및 혈관염증개선 가능성도 확인되었다.
특히 CT200군에서 HDL-C, LDL-C, leptin, adiponectin, PPAR 및 PAF의 통계적으로 유의한 수준의 개선이 이루어진 반면